ФИТОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ И ФАРМАКОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ SOLANUM PROCUMBENS L.: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

УДК 615.011.5: 615.322

DOI: 10.31684/25418475-2026-3-121

Вьет Кыонг Чан
Дальневосточный федеральный университет, Передовая инженерная школа «Институт биотехнологий, биоинженерии и пищевых систем», г. Владивосток

Разгонова Майя Петровна
Федеральный исследовательский центр «Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова», Дальневосточная опытная станция, г. Владивосток

Голохваст Кирилл Сергеевич
Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий РАН, Новосибирская область, Новосибирский район, р.п. Краснообск

^*** Авторские права принадлежат Вьет Кыонг Чан и соавт. Данная статья находится в открытом доступе и распространяется в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution (CC BY 4.0), которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение в любом формате при условии указания автора и источника. https://newbmn.asmu.ru

Ключевые слова: Solanum procumbens L., лекарственное растение, противовоспалительное действие, гепатопротекторная активность, цитотоксичность, антибактериальные свойства, фитохимический состав, стероидные сапонины, апоптоз, этнофармакология

Аннотация:

Введение. Solanum procumbens L. – лекарственное растение семейства Solanaceae, используемое в традиционной медицине стран Восточной и Юго-Восточной Азии, в том числе Вьетнама, при артрите, заболеваниях печени, инфекционных и опухолевых заболеваниях. Несмотря на длительное применение этого вида в народной медицине, сведения о его химическом составе и фармакологической активности остаются фрагментарными.

Цель исследования. Обобщить современные данные об этнофармакологическом применении, фитохимическом составе и фармакологической активности S. procumbens.

Материалы и методы. Объектом исследования служил вид Solanum procumbens L. Работа выполнена в форме аналитического обзора литературы, посвященной традиционному использованию растения, выделенным из него биологически активным соединениям и установленным видам фармакологической активности.

Результаты. Показано, что S. procumbens содержит различные группы вторичных метаболитов, включая стероидные сапонины, стероидные алкалоиды, лигнаны, неолигнаны, стероидные пероксиды и фенольные кислоты. К числу идентифицированных соединений относятся torvoside J, torvoside K, (+)-syringaresinol, (+)-lyoniresinol, ergosterol peroxide, solacanin A, solasodine, vanillic acid и др. По данным экспериментальных исследований, экстракты и отдельные производные S. procumbens проявляют противовоспалительную активность на модели ревматоидного артрита, гепатопротекторное действие при токсическом поражении печени, а также умеренную антибактериальную и противогрибковую активность. Отдельного внимания заслуживают биосинтезированные с использованием S. procumbens наночастицы оксида цинка, индуцирующие апоптоз клеток рака легкого A549 за счет усиления окислительного стресса.

Заключение. Полученные и обобщенные данные подтверждают фармакологическую значимость S. procumbens как источника природных биологически активных веществ и указывают на необходимость дальнейшего изучения механизмов действия, токсикологических характеристик и возможностей практического применения этого вида.

Библиографические ссылки:

Nguyen X.H., Nguyen T.N., Nguyen T.T.M. Chemical constituents isolated from the whole plant of Solanum procumbens. Sci Technol Dev J Nat Sci. 2018; 2(6): 134–138. https://doi.org/10.32508/stdjns.v2i6.854

Aubriot X., Knapp S. A revision of the "spiny solanums" of Tropical Asia (Solanum, the Leptostemonum Clade, Solanaceae). PhytoKeys. 2022; 198: 1–270. https://doi.org/10.3897/phytokeys.198.79514

Le H.T.A. Steroidal saponins from Solanum procumbens growing in Vietnam. J Multidiscip Eng Sci Technol. 2017; 4(9): 8222–8225.

Abhishek R.U., Thippeswamy S., Manjunath K., Mohana D.C. Antifungal and antimycotoxigenic potency of Solanum torvum Swartz leaf extract: isolation and identification of compound active against mycotoxigenic strains of Aspergillus flavus and Fusarium verticillioides. J Appl Microbiol. 2015; 119(6): 1624–1636. https://doi.org/10.1111/jam.12956

Tran T.T.T., Dang H.P., Nguyen T.N. Chemical constituents from methanolic extract of Solanum procumbens Lour. (Solanaceae). Vietnam J Sci Technol Eng. 2019; 61(3): 9-11. https://doi.org/10.31276/VJSTE.61(3).09-11

Nguyen N.T., Tran T.T.T., Dang H.P., et al. A new 8,3′-neolignan from Solanum procumbens Lour. Nat Prod Res. 2022; 36(19): 5081–5085. https://doi.org/10.1080/14786419.2021.1916746.

Truong T.T.H., Hoang A.T., Do P.H., et al. Two new steroidal saponins from Solanum procumbens. Nat Prod Commun. 2018; 13(10): 1271–1274. https://doi.org/10.1177/1934578X1801301009.

Nguyen L.T.T., Tran Q.T.T., Vo D.T., et al. Identification of medicinal plant Solanum procumbens Lour. using DNA barcodes and morphology. Plant Gene. 2025; 43: 100517. https://doi.org/10.1016/j.plgene.2025.100517.

Do X.H., Nguyen T.N., Dang T.C., et al. Anti-inflammatory effects of Solanum procumbens on a low dose complete Freund's adjuvant-induced arthritis rat model. Asian Pac J Trop Biomed. 2023; 13(5): 214–221. https://doi.org/10.4103/2221-1691.377408

Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2020. CA Cancer J Clin. 2020; 70(1): 7–30. https://doi.org/10.3322/caac.21590

Walker A.J., Baldwin D.R., Card T.R., et al. Risk of venous thromboembolism in people with lung cancer: a cohort study using linked UK healthcare data. Br J Cancer. 2016; 115(1): 115–121. https://doi.org/10.1038/bjc.2016.143.

Aziz I.I.A., Riyad A.A., Hussian A.A., et al. Solanum procumbens-derived zinc oxide nanoparticles suppress lung cancer in vitro through elevation of ROS. Bioinorg Chem Appl. 2022; 2022: 2724302. https://doi.org/10.1155/2022/2724302.

Fakhroueian Z., Rajabi S., Salehi N., et al. Anticancer properties of novel zinc oxide quantum dot nanoparticles against breast cancer stem-like cells. Anticancer Drugs. 2022; 33(1): e311–e326. https://doi.org/10.1097/CAD.0000000000001207

Pan X., Qi Y., Du Z., et al. Zinc oxide nanosphere for hydrogen sulfide scavenging and ferroptosis of colorectal cancer. J Nanobiotechnology. 2021; 19(1): 392. https://doi.org/10.1186/s12951-021-01069-y.

Nguyen Q.V., Eun J.B. Antimicrobial activity of some Vietnamese medicinal plants extracts. J Med Plants Res. 2013; 7(35): 2597–2605. https://doi.org/10.5897/JMPR2013.4452.

Thai N.P., Trung L.V., Hai N.K., Huynh L. Protective efficacy of Solanum hainanense Hance during hepatotoxicity in male mice with prolonged and small oral doses of trinitrotoluene. J Occup Health. 1998; 40(4): 276–278. https://doi.org/10.1539/joh.40.276

Nguyen N., Do T., Le T., et al. Chemical constituents and their alpha-glucosidase inhibitory activity of Solanum procumbens. Sci Technol Dev J Nat Sci. 2021; 5(3): 1326–1333. https://doi.org/10.32508/stdjns.v5i3.1027.

Nguyen P.M. Thermal treatments affected to quality attributes of Solanum procumbens Lour. Plant Sci Today. 2022; 9(1): 150–156. https://doi.org/10.14719/pst.2022.9.1.1370.

To T.T.H., Nhi N.T.H., Day P.V. Effect of Solanum procumbens Lour. extract on survival, growth performances, immune responses and against Vibrio parahaemolyticus causing acute hepatopancreas necrosis disease in white leg shrimp (Litopenaeus vannamei). Indian J Anim Res. 2022; 56(12): 1513–1518. https://doi.org/10.18805/IJAR.BF-1566.

Solowey E., Lichtenstein M., Sallon S., et al. Evaluating medicinal plants for anticancer activity. Sci World J. 2014; 2014: 721402. https://doi.org/10.1155/2014/721402.

Amid A., Chik W.D.W., Jamal P., et al. Microarray and quantitative PCR analysis of gene expression profiles in response to treatment with tomato leaf extract in MCF-7 breast cancer cells. Asian Pac J Cancer Prev. 2012; 13(12): 6319–6325. https://doi.org/10.7314/APJCP.2012.13.12.6319

Lin Y.T., Huang A.C., Kuo C.L., et al. Induction of cell cycle arrest and apoptosis in human osteosarcoma U-2 OS cells by Solanum lyratum extracts. Nutr Cancer. 2013; 65: 469–479. https://doi.org/10.1080/01635581.2013.757627.

Akbar N., Thakur V.S., Yunus M., et al. Selective cell cycle arrest and induction of apoptosis in human prostate cancer cells by a polyphenol-rich extract of Solanum nigrum. Int J Mol Med. 2012; 29(2): 277–284. https://doi.org/10.3892/ijmm.2011.835.

Nieto-Sampedro M., Valle-Argos B., Gómez-Nicola D., et al. Inhibitors of glioma growth that reveal the tumour to the immune system. Clin Med Insights Oncol. 2011; 5: 265–314. https://doi.org/10.4137/CMO.S7685

Challal S., Buenafe O.E.M., Queiroz E.F., et al. Zebrafish bioassay-guided microfractionation identifies anticonvulsant steroid glycosides from the Philippine medicinal plant Solanum torvum. ACS Chem Neurosci. 2014; 5(10): 993–1004. https://doi.org/10.1021/cn5001342.

Knap B., Nieoczym D., Kundap U., et al. Zebrafish as a robust preclinical platform for screening plant-derived drugs with anticonvulsant properties: a review. Front Mol Neurosci. 2023; 16: 1221665. https://doi.org/10.3389/fnmol.2023.1221665.

Chen G.-Y., Pan Y.-C., Wu T.-Y., et al. Potential natural products that target the SARS-CoV-2 spike protein identified by structure-based virtual screening, isothermal titration calorimetry and lentivirus particles pseudotyped (Vpp) infection assay. J Tradit Complement Med. 2022; 12(1): 73–89. https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2021.09.002

Zhang L., Tian Y., Zhang L., et al. A comprehensive review on the plant sources, pharmacological activities and pharmacokinetic characteristics of syringaresinol. Pharmacol Res. 2025; 212: 107572. https://doi.org/10.1016/j.phrs.2024.107572.

Guo X.-H., Pang L., Gao C.-Y., et al. Lyoniresinol attenuates cerebral ischemic stroke injury in MCAO rat based on oxidative stress suppression via regulation of Akt/GSK-3β/Nrf2 signaling. Biomed Pharmacother. 2023; 167: 115543. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2023.115543.

Zheng L., Wong Y., Shao M., et al. Apoptosis induced by 9,11-dehydroergosterol peroxide from Ganoderma lucidum mycelium in human malignant melanoma cells is Mcl-1 dependent. Mol Med Rep. 2018; 18(1): 938–944. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.9035

Ling T., Arroyo-Cruz L.V., Smither W.R., et al. Early preclinical studies of ergosterol peroxide and biological evaluation of its derivatives. ACS Omega. 2024; 9(35): 37117–37127. https://doi.org/10.1021/acsomega.4c04350.

Nguyen H.L., Le T.H.T. Solasodine production from cell culture of Solanum hainanense Hance. Biotechnol Bioprocess Eng. 2011; 16: 581–586. https://doi.org/10.1007/s12257-010-0118-8

Wang J., Wang D., Ma S., et al. Solasodine suppresses nasopharyngeal carcinoma progression by inducing ferroptosis. Sci Rep. 2025; 15: 17247. https://doi.org/10.1038/s41598-025-93834-4.

Zhou Y., Kim J.T., Zhan X., et al. Solasodine inhibited the proliferation of gastric cancer cells through suppression of Hedgehog/Gli1 signaling. Food Sci Biotechnol. 2025; 34: 3693–3702. https://doi.org/10.1007/s10068-025-01946-4.

Magiera A., Kołodziejczyk-Czepas J., Olszewska M.A. Antioxidant and anti-inflammatory effects of vanillic acid in human plasma, human neutrophils, and non-cellular models in vitro. Molecules. 2025; 30(3): 467. https://doi.org/10.3390/molecules30030467.

Abd-Alla H.I., Shaaban M., Shaaban K.A., et al. New bioactive compounds from Aloe hijazensis. Nat Prod Res. 2009; 23(11): 1035–1049. https://doi.org/10.1080/14786410802242851.

Arif T. Salicylic acid as a peeling agent: a comprehensive review. Clin Cosmet Investig Dermatol. 2015; 8: 455–461. https://doi.org/10.2147/CCID.S84765.

Ye C.X., Yi J.L., Su Z., et al. 2% supramolecular salicylic acid hydrogel vs. adapalene gel in mild to moderate acne vulgaris treatment: a multicenter, randomized, evaluator-blind, parallel-controlled trial. J Cosmet Dermatol. 2024; 23(6): 2125–2134. https://doi.org/10.1111/jocd.16238.

El-Zawawy N.A., Ali S.S., Khalil M.A., et al. Exploring the potential of benzoic acid derived from the endophytic fungus strain Neurospora crassa SSN01 as a promising antimicrobial agent in wound healing. Microbiol Res. 2022; 262: 127108. https://doi.org/10.1016/j.micres.2022.127108

Информация об авторах

Вьет Кыонг Чан
аспирант, Дальневосточный федеральный университет, г. Владивосток.
E-mail: chan.vk@dvfu.ru.

Разгонова Майя Петровна
к. т. н., доцент, директор Дальневосточной опытной станции – филиала ВИР имени Н.И. Вавилова, г. Владивосток.
E-mail: m.razgonova@vir.nw.ru.

Голохваст Кирилл Сергеевич
чл.-корр. РАО, проф. РАН, д. б. н., директор, Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий РАН, Новосибирская область, Новосибирский район, р.п. Краснообск.
E-mail: golokhvast@sfsca.ru.

PDF

Поступила в редакцию:

05.05.2026

Принята к публикации:

28.05.2026

Опубликована:

30.09.2026

№ 3(2026) Бюллетень медицинской науки